OBJETIVOS: Proveer a los alumnos una actualización sobre los últimos avances en el proceso de eritropoyesis, la producción in vitro de eritrocitos, y su caracterización mediante técnicas de microscopía, citometría de flujo, biología molecular y microfluídica.
CLASES TEÓRICAS: Mecanismos moleculares de la eritropoyesis. Clearance de organelas y autofagia en la maduración de eritrocitos. Métodos para la producción in vitro de eritrocitos. Caracterización de eritrocitos por microscopía de fluorescencia y microscopía electrónica. Alteración de eritrocitos en hipertensión y diabetes. Aplicaciones de la citometría de flujo al estudio de la fisiología y fisiopatología de eritrocitos. Microfluídica y microfabricación para el estudio de la fisiología y fisiopatología de eritrocitos. Estudio de la señalización purinérgica mediada por eritrocitos mediante luminometría.
CLASES PRÁCTICAS: Introducción al trabajo con eritrocitos. Determinación de la liberación de ATP en eritrocitos mediante luminometría. Tinción de eritrocitos con sondas fluorescentes vitales y no vitales. Determinación del calcio intracelular, exposición de fosfatidilserina y volumen celular. Evaluación de la deformabilidad usando dispositivos de microfluídica.
DIRECTORES: Dr. Nicolás Saffioti, Prof. Dr. Pablo Schwarzbaum
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico, Biotecnólogo, Licenciado en Ciencias Biológicas, Licenciado en Genética, Farmacéutico, Médico, Odontólogo, Químico.
ARANCEL: $40.000
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 1.5 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 0.75 puntos
OBJETIVOS: Brindar al profesional los conceptos y las herramientas necesarias para abordar el estudio de los mecanismos de transducción de señales estimulados por citoquinas, factores de crecimiento u otros compuestos orgánicos que promueven o inhiben la proliferación celular. Proveer las herramientas teóricas requeridas para evaluar los diferentes tipos de muerte celular (apoptosis, necrosis y autofagia). Discutir la metodología actual utilizada para identificar distintas modalidades de muerte y cascadas de transducción de señales en diferentes sistemas biológicos.
PERÍODO DE DESARROLLO: del 22 al 29 de junio de 2026. Lunes a Lunes, todas las mañanas de 10 a 13:30 h. Tardes de 14,30 a 18,00.
CLASES TEÓRICAS: Proliferación y diferentes modalidades de muerte celular, métodos para su evaluación. Transducción de señales de citoquinas o factores de crecimiento que activan tirosinas quinasas. Modulación de las vías de transducción. Uso de inhibidores farmacológicos, mutantes dominantes negativas o RNA de interferencia. Internalización de receptores: hipótesis de la señalización endosomal. Herramientas para el estudio de proteínas fosforiladas: Western Blot, InCell Wetern Assay, inmunoprecipitación, citometría de flujo.
CLASES PRÁCTICAS: Se determinará el efecto mitogénico o antiproliferativo de citoquinas (IFN alfa, G-CSF) u otros compuestos orgánicos (ftalocianinas y derivados de penicilina) en diferentes líneas de células en cultivo. Se evaluará, en cada uno de los sistemas a estudiar, el efecto de distintos inhibidores de vías de señalización. Se examinará el nivel de fosforilación de algunos intermediarios de vías de señalización y el efecto de inhibidores farmacológicos, de RNAs de interferencia o de mutantes dominantes negativas. Los resultados experimentales obtenidos en ensayos de proliferación o por técnicas de Western Blot serán analizados por los alumnos, quienes confeccionarán un informe que será discutido entre pares. También se analizarán en forma cuantitativa resultados de ensayos de herida mediante el software Image J. Se examinará la translocación nuclear de factores de transcripción mediante técnicas de inmunofluorescencia. Se realizará un taller de análisis de datos con software de citometría de flujo: generación de gráficos, regiones y cuadrantes, compensación de fluorescencias “off-line” e interpretación de resultados.
DIRECTORA: Prof. Dra. Roguin Leonor
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico, Farmacéutico, Lic. en Biología, Lic. en Química, Biotecnólogo o carreras afines.
ARANCEL: $180.000
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 2.5 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 1.25 puntos
OBJETIVOS: El curso busca capacitar al alumno en el diseño de un trabajo de investigación, proponer y escribir un trabajo científico y analizar datos experimentales. Estos objetivos se concretan con la escritura de un proyecto de investigación, el cual será evaluado al final del curso. Para ello, se establecerá un sistema de tutorías y se reproducirá el proceso de evaluación por pares.
PERÍODO DE DESARROLLO: del 12 de agosto al 4 de noviembre de 2026. Miércoles de 14 a 18 hs.
CLASES TEÓRICAS: Luego de una introducción histórico-filosófica a tópicos generales de metodología, el plan del curso simula el proceso de investigación y recorre sus distintas etapas: elección del tema, redacción del proyecto, tratamiento estadístico de los datos, redacción de los resultados. Estando el cuerpo docente formado por investigadores experimentados, se buscará en todo momento transmitir la experiencia de la investigación, junto con los contenidos intelectuales necesarios para articularla conceptualmente.
CLASES PRÁCTICAS: Los trabajos prácticos y los talleres consistirán en la aplicación de los conocimientos adquiridos durante el desarrollo de las clases teóricas: elección del tema, redacción del proyecto, tratamiento estadístico de los datos, redacción de los resultados. Escritura de la tesis de maestría y doctoral. Se pondrán en práctica un sistema de tutorías y el proceso de evaluación por pares.
DIRECTORA: Dra. Mónica Montes
COORDINADORA: Dra. Mariela Ferreira Gomes
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Profesionales del área bioquímica, farmacéutica, médica y biológica. profesionales de las áreas sociales.
ARANCEL: $400.000
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 3.5 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 1.75 puntos
OBJETIVOS: Brindar al profesional los lineamientos teóricos y prácticos para la ejecución de técnicas de transfección, para su aplicación en actividades de investigación básica, en la industria y/o en protocolos de terapia génica clínica.
PERÍODO DE DESARROLLO: del 17 al 28 de agosto de 2026. Lunes a viernes de 16 a 19 hs.
CLASES TEÓRICAS: Métodos de transfección, transitoria y estable. Elección del método más conveniente. Eficiencia y optimización. Transfección química con plásmidos de DNA o shRNA; siRNA o miRNA; CRISPR. Transfección in vivo. Transfección con sistemas virales (transducción). Transfección por métodos físicos. Consejos para lograr una transfección exitosa. Aplicaciones, estudio de la función, expresión y/o edición de genes y proteínas, producción de proteínas recombinantes humanas.
CLASES PRÁCTICAS: Taller para el diseño experimental. Discusión sobre la elección de protocolos. Transfección de líneas celulares humanas con lípidos y polímeros catiónicos con DNA, shRNA, siRNA y CRISPR/Cas9 para modular la expresión de proteínas. Uso de vectores de fusión para expresar proteínas de interés unidas a proteínas fluorescentes. Transducción con lentivirus y adenovirus. Electroporación. Co-transfección para monitorear eficiencia. Análisis de la expresión proteica luego de la transfección por Western blot, microscopía de fluorescencia y actividad enzimática. Generación, análisis e interpretación de gráficos, imágenes y resultado.s
DIRECTORA: Prof. Dra. Ma. Fernanda Troncoso
COORDINADORA: Prof. Dra. Ma. Victoria Espelt
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico/a, Farmacéutico/a, Lic. en Ciencias Biológicas, Lic. en Biotecnología, o egresados de carreras afines. Otros requisitos: Presentar Curriculum vitae
ARANCEL: $225.000
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 1.5 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 0.75 puntos
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