OBJETIVOS: La Genética y Genómica es posiblemente, dentro de las ciencias de la vida, la que mayor auge ha adquirido en los últimos años. Paralelamente a su desarrollo, cada día tiene más repercusiones en todas las facetas de la biomedicina: diagnóstico, pronóstico y terapéutica. El programa está dividido en unidades con los siguientes objetivos: 1) Reflexionar sobre la variabiliad genética y los mecanismos de la transmisión y expresión de la información genética en humanos. 2) Conocer los mecanismos moleculares que dan cuenta de la aparición y la progresión de las enfermedades, sentando las bases de estrategias de prevención y diagnóstico personalizados. 3) Aprender las tecnologías genéticas y genómicas para la identificación de variantes de secuencia. 4) Entender el rol de los polimorfismos genéticos en la respuesta a los fármacos para asegurar su eficacia terapéutica y minimizar los posibles efectos adversos de acuerdo a los perfiles genéticos.
PERÍODO DE DESARROLLO: del 6 de mayo al 15 de julio de 2026. Miércoles de 18 a 22 hs.
CLASES TEÓRICAS: El genoma humano. Organización del genoma humano. El epigenoma. Variantes Génicas. Clasificación de las variantes génicas. Metodologías moleculares para la identificación de variantes, clásicas y de última generación. Edición del genoma. Bioinformática. Concepto de enfermedades genéticas: germinales y somáticas; monogénicas, oligogénicas y multifactoriales; monoalélicas y polialélicas. Principios de genética médica. Diagnóstico molecular. Genética Molecular de Hemoglobinopatías y Talasemias. Neurobiología Molecular. Endocrinología Molecular. Bases genético-moleculares de las enfermedades multifactoriales. Genética en Oncohematología. Introducción a la Farmacogenética y Farmacogenómica. Farmacogenómica clínica. Diagnóstico molecular y genómico de enfermedades infecciosas.
DIRECTORA: Prof. Dra. Carina Rivolta
COORDINADOR: Dr. Ariel López
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímicos, Farmacéuticos, Médicos, Licenciados en Biología, Licenciados en Biotecnología, Licenciados en Genética o carreras afines.
ARANCEL: A confirmar
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 2 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 1 punto
OBJETIVOS:
- – Conocer los componentes de la respuesta inmune innata y su papel en la génesis y regulación del proceso inflamatorio.
- – Comprender el papel que desempeñan los productos de diversas enzimas proinflamatorias en el curso del proceso inflamatorio.
- – Estudiar el proceso de formación de vasos en condiciones inflamatorias fisiológicas y patológicas a partir de células precursoras en presencia de moduladores positivos y negativos.
- – Comprender el papel de los receptores semejantes a Toll en el reconocimiento de productos bacterianos y otros patrones moleculares asociados a patógenos, así como los eventos moleculares intracelulares que se producen en la respuesta inflamatoria sistémica.
- – Identificar la función de factores de transcripción tipo NF-kB en la inducción de genes en procesos inflamatorios agudos y crónicos, y su papel como blanco de drogas antiinflamatorias.
- – Estudiar la interrelación entre la inflamación y la respuesta inmune mediada por células dendríticas.
- – Analizar los factores que conducen a la apoptosis celular durante la inflamación.
- – Estudiar la farmacodinamia y farmacocinética de antiinflamatorios no esteroideos y glucocorticoides y evaluar la potencialidad de moléculas endógenas como agentes antiinflamatorios.
- – Evaluar la importancia de la inflamación crónica como factor de riesgo en distintas patologías.
- – Estimular en los alumnos la lectura crítica para la evaluación de la calidad de la información científica.
- – Favorecer en los alumnos la capacidad de la comunicación científica, a través de la presentación de trabajos en seminarios de discusión.
PERÍODO DE DESARROLLO: del 1 de septiembre al 29 de octubre de 2026. Martes y Jueves de 9:30 a 13 hs.
CLASES TEÓRICAS: Bases celulares y moleculares de la Inmunidad innata; cinética de su activación; interacción con la respuesta inmune adaptativa. Maduración y diferenciación de células dendríticas. Inflamación. Mediadores. Inflamación Aguda-Shock séptico. El rol de la mitocondria en la inflamación y la apoptosis celular. Angiogénesis y vasculogénesis. Alteraciones inflamatorias por deficiencia nutricional pre y post natal. La inflamación en infecciones. Inflamación crónica: mediadores, su rol en la autoinmunidad, cáncer, y enfermedad cardiovascular. Neuroinflamación. Conceptos de osteoinmunología. Regulación de la respuesta inflamatoria: lípidos, cannabinoides, radiación UV, hormonas esteroideas. Bases farmacológicas de los anti-inflamatorios esteroides y no esteroides.
CLASES PRÁCTICAS: Talleres de discusión: Los alumnos presentarán seminarios sobre trabajos científicos seleccionados por los docentes coordinadores, sobre los temas tratados en las clases teóricas:
*La Inflamación como etapa efectora clave en reacciones inmunes.
*Productos de COX y NOS como moduladores de la actividad de metaloproteasas.
*Señalización por receptores Toll.
*NF-kB como vínculo entre inflamación e inmunidad con el establecimiento y desarrollo de patologías crónicas.
*Influencia de los productos inflamatorios sobre las células dendríticas y su papel en la regulación del sistema inmune.
*Angiogénesis. Características del proceso en la inflamación fisiológica y patológica.
*Mediadores lipídicos y su rol como reguladores positivos y negativos de la inflamación.
*Inmunidad innata e inflamación. Una clave para comprender las enfermedades relacionadas con el envejecimiento.
*Neuroinflamación. Modelos para el estudio de la inflamación crónica del sistema nervioso.
*Sistema inmune cutáneo. Efecto de la radiación ultravioleta en patologías inflamatorias de la piel.
*Osteoporosis. Estrógenos como reguladores de la inflamación. Rol terapéutico de fitoesteroides.
*Ventajas terapéuticas comparativas en el uso de distintos antiinflamatorios no esteroideos.
*Regulación del proceso inflamatorio por glucocorticoides.
DIRECTORA: Prof. Dra. Andrea Canellada
COORDINADORA: Dr. Alejandro Español
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Título de Grado en las siguientes disciplinas: Bioquímica, Farmacia, Medicina, Ciencias Biológicas, Biotecnología, Química, Ciencias Veterinarias, Odontología, Genética, Ingeniería de Alimentos, Ciencia y Tecnología de Alimentos, y graduados de disciplinas afines.
Otros requisitos: Enviar email con un CV a los directores del curso. Dra Dra. Andrea Canellada (acanell@ffyb.uba.ar); Dr. Alejandro Español (aespan_1999@yahoo.com)
ARANCEL:
Egresados Universidades Nacionales Públicas: $420.000
Egresados Universidades Nacionales Privadas: $490.000
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 3.5 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 1.75 puntos
OBJETIVOS: Dar las herramientas teórico practicas necesarias para la evaluación Microbiológica de productos, ambientes y personal operativo intervinientes en la producción de fármacos , cosméticos y biomédicos.
PERÍODO DE DESARROLLO: de marzo a junio de 2026. Miércoles y Jueves de 18 a 21 hs.
LUGAR DE REALIZACIÓN: Cátedra de Microbiología. Aula seminarios S06, Segundo subsuelo
CLASES TEÓRICAS: Introducción a los métodos microbiológicos. Ecología microbiana de las diversas fuentes y procesos. Métodos de monitoreo de productos y materias primas. (clásicos y rápidos). Buenas prácticas de fabricación. Legislación. Conservadores y evaluación de la actividad de los mismos. Biomédicos controles aplicables. Control de áreas de producción, personal y vestimenta. Control de esterilidad, determinación de endotoxinas. Reglamentaciones
CLASES PRÁCTICAS: Evaluación cuantitativa de los diversos grupos de microorganismos. Validación de métodos microbiológicos. Marchas analíticas según legislación. Evaluación cuali cuantitativa de áreas, superficies y personal. Control de efectividad de agentes conservadores
DIRECTOR: Prof. Esp. Sergio Teves
COORDINADORA: Bioq. y Farm. Verónica Pioli
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Farmacéutico, Bioquímico, profesionales del área analítica.
ARANCEL: $322.000
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 4 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 2 puntos.
OBJETIVOS: Conocer y profundizar en las diferentes operaciones unitarias involucradas en los procesos industriales de purificación de bioproductos. Comprender como concatenar secuencialmente las distintas operaciones unitarias para diagramar un proceso integral de purificación que sea racional, viable y económicamente rentable.
Aprender acerca el uso del equipamiento y de las resinas cromatográficas empleadas en la purificación de bioproductos.
PERÍODO DE DESARROLLO: del 4 al 15 de mayo de 2026. Lunes a Viernes. Horario: clases sincrónicas a convenir en la franja 9 a 18 hs. Actividades presenciales de 9 a 17 hs.
LUGAR DE REALIZACIÓN (Aula confirmada en el momento de la presentación del curso)
Cátedra: Biotecnología
Aula: Industrias (601) – Piso 6
CLASES TEÓRICAS:
El curso apunta a que los alumnos conozcan las operaciones unitarias que componen un proceso de purificación de proteínas, así como su uso en forma coordinada para establecer un proceso racional, viable y económicamente rentable.
Unidad 1: Introducción al downstream processing
Importancia de la recuperación y purificación del producto (downstream processing). Tipos de producto según sus características químicas y su ubicación en el ente productor. Operaciones unitarias utilizadas en la recuperación y purificación de productos. Productos recombinantes. Importancia y mercado actual. Expresión de los resultados de un proceso de purificación.
Unidad 2: Ruptura celular
Métodos utilizados. Escala de los mismos. Mecanismo. Descripción de los equipos usados. Ventajas e inconvenientes de cada uno. Elección del método según el microorganismo y la localización del producto de interés en el mismo.
Unidad 3: Separaciones sólido-líquido
Centrífugas industriales. Filtración, microfiltración, ultrafiltración y ósmosis reversa. Equipos industriales. Estudio comparativo de la centrifugación y la filtración para su uso en distintos procesos biotecnológicos.
Unidad 4: Precipitación
Clasificación de los métodos aplicables en biotecnología según el agente precipitante. Fundamento teórico y utilización práctica. Ventajas e inconvenientes de cada uno.
Unidad 5: Partición en dos fases acuosas
Concepto teórico. Diagrama de fases. Factores que influyen en la partición de las proteínas. Aplicación a los procesos biotecnológicos para la purificación de proteínas de interés comercial. Ventajas e inconvenientes. Partición por afinidad.
Unidad 6: Cromatografía de exclusión molecular
Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de exclusión molecular. Rango de fraccionamiento de proteínas en el estado nativo y en el estado desnaturalizado. Características de las matrices cromatográficas. Elección de la matriz cromatográfica. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.
Unidad 7: Cromatografía de intercambio iónico
Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de intercambio iónico. Elección de la matriz cromatográfica. Capacidad nominal y capacidad dinámica. Estrategias para la unión y elución de la proteína de interés. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.
Unidad 8: Cromatografía de interacción hidrofóbica
Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de interacción hidrofóbica. Influencia de la densidad de ligando, temperatura, pH y fuerza iónica en la unión y elución de la proteína de interés. Elección de la matriz cromatográfica. Comparación con la cromatografía de alta performance en fase reversa. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.
Unidad 9: Cromatografía de afinidad
Concepto teórico. Tipos de cromatografía de afinidad según su especificidad. Matrices comerciales y de preparación propia. Elección de ligandos de afinidad. Bibliotecas de ligandos. Estrategias para la unión y elución de la proteína de interés. Escalado. Ventajas e inconvenientes de su aplicación a la purificación de biomoléculas en biotecnología.
Unidad 10: Cromatografía preparativa
Concepto teórico. Isotermas de adsorción en el equilibrio. Curvas de breakthrough. Interacciones soluto-matriz cromatográfica y soluto-soluto en cromatografía preparativa. Efecto de la sobrecarga de muestra sobre los cromatogramas obtenidos.
Unidad 11: Diseño y optimización de procesos de purificación
Diseño de procesos racionales de purificación según las características de las operaciones unitarias. Influencia del número de etapas y del rendimiento de cada una. Acondicionamiento de la muestra. Reglas para racionalizar un esquema de purificación. Optimización del proceso de purificación: resolución, carga de muestra y velocidad del proceso.
Unidad 12: Purificación de proteínas recombinantes
Métodos según la ubicación celular de la proteína recombinante. Cuerpos de inclusión. Proteínas de fusión. Métodos para el clivaje de las proteínas de fusión. Purificación en el estado desnaturalizado. Métodos de renaturalización. Estrategias de ingeniería genética para facilitar la purificación del producto. Estudio de casos: activador de plasminógeno tisular e insulina.
Unidad 13: Cromatografía convectiva
Soportes difusivos, perfusivos y convectivos. Características de las matrices cromatográficas. Diferencias en relación a la transferencia de masa. Performance industrial de los geles blandos difusivos, geles blandos perfusivos y las membranas cromatográficas.
CLASES PRÁCTICAS:
Actividades de Laboratorio:
-Determinación de parámetros cromatográficos en equilibrio: isotermas de adsorción.
– Determinación de parámetros cromatográficos en columna: curvas de breakthrough
– Proceso integral de purificación de proteína
Actividades de discusión de casos
– Producción de antivenenos
– Producción de anticuerpos monoclonales y biosimilares
Talleres de resolución de problemas
– Problemas de ruptura celular
– Problemas de diseño de procesos
– Problemas de escalado
DIRECTOR: Prof. Dr. Federico Wolman
COORDINADORA: Prof. Dra. María Victoria Miranda
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico, Farmacéutico, Lic. en Biología, Lic. en Química, Lic. En Biotecnología, Médico, Odontólogo, Veterinario y otras carreras afines.
ARANCEL: $450.000
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 3.5 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 1.75 puntos
OBJETIVOS: Conocer y profundizar en las diferentes operaciones unitarias involucradas en los procesos industriales de purificación de bioproductos. Comprender como concatenar secuencialmente las distintas operaciones unitarias para diagramar un proceso integral de purificación que sea racional, viable y económicamente rentable.
Aprender acerca el uso del equipamiento y de las resinas cromatográficas empleadas en la purificación de bioproductos.
PERÍODO DE DESARROLLO: del 4 al 8 de mayo de 2026. Lunes a Viernes. Horario: clases sincrónicas a convenir en la franja 9 a 18 hs.
CLASES TEÓRICAS:
El curso apunta a que los alumnos conozcan las operaciones unitarias que componen un proceso de purificación de proteínas, así como su uso en forma coordinada para establecer un proceso racional, viable y económicamente rentable.
Unidad 1: Introducción al downstream processing
Importancia de la recuperación y purificación del producto (downstream processing). Tipos de producto según sus características químicas y su ubicación en el ente productor. Operaciones unitarias utilizadas en la recuperación y purificación de productos. Productos recombinantes. Importancia y mercado actual. Expresión de los resultados de un proceso de purificación.
Unidad 2: Ruptura celular
Métodos utilizados. Escala de los mismos. Mecanismo. Descripción de los equipos usados. Ventajas e inconvenientes de cada uno. Elección del método según el microorganismo y la localización del producto de interés en el mismo.
Unidad 3: Separaciones sólido-líquido
Centrífugas industriales. Filtración, microfiltración, ultrafiltración y ósmosis reversa. Equipos industriales. Estudio comparativo de la centrifugación y la filtración para su uso en distintos procesos biotecnológicos.
Unidad 4: Precipitación
Clasificación de los métodos aplicables en biotecnología según el agente precipitante. Fundamento teórico y utilización práctica. Ventajas e inconvenientes de cada uno.
Unidad 5: Partición en dos fases acuosas
Concepto teórico. Diagrama de fases. Factores que influyen en la partición de las proteínas. Aplicación a los procesos biotecnológicos para la purificación de proteínas de interés comercial. Ventajas e inconvenientes. Partición por afinidad.
Unidad 6: Cromatografía de exclusión molecular
Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de exclusión molecular. Rango de fraccionamiento de proteínas en el estado nativo y en el estado desnaturalizado. Características de las matrices cromatográficas. Elección de la matriz cromatográfica. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.
Unidad 7: Cromatografía de intercambio iónico
Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de intercambio iónico. Elección de la matriz cromatográfica. Capacidad nominal y capacidad dinámica. Estrategias para la unión y elución de la proteína de interés. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.
Unidad 8: Cromatografía de interacción hidrofóbica
Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de interacción hidrofóbica. Influencia de la densidad de ligando, temperatura, pH y fuerza iónica en la unión y elución de la proteína de interés. Elección de la matriz cromatográfica. Comparación con la cromatografía de alta performance en fase reversa. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.
Unidad 9: Cromatografía de afinidad
Concepto teórico. Tipos de cromatografía de afinidad según su especificidad. Matrices comerciales y de preparación propia. Elección de ligandos de afinidad. Bibliotecas de ligandos. Estrategias para la unión y elución de la proteína de interés. Escalado. Ventajas e inconvenientes de su aplicación a la purificación de biomoléculas en biotecnología.
Unidad 10: Cromatografía preparativa
Concepto teórico. Isotermas de adsorción en el equilibrio. Curvas de breakthrough. Interacciones soluto-matriz cromatográfica y soluto-soluto en cromatografía preparativa. Efecto de la sobrecarga de muestra sobre los cromatogramas obtenidos.
Unidad 11: Diseño y optimización de procesos de purificación
Diseño de procesos racionales de purificación según las características de las operaciones unitarias. Influencia del número de etapas y del rendimiento de cada una. Acondicionamiento de la muestra. Reglas para racionalizar un esquema de purificación. Optimización del proceso de purificación: resolución, carga de muestra y velocidad del proceso.
Unidad 12: Purificación de proteínas recombinantes
Métodos según la ubicación celular de la proteína recombinante. Cuerpos de inclusión. Proteínas de fusión. Métodos para el clivaje de las proteínas de fusión. Purificación en el estado desnaturalizado. Métodos de renaturalización. Estrategias de ingeniería genética para facilitar la purificación del producto. Estudio de casos: activador de plasminógeno tisular e insulina.
Unidad 13: Cromatografía convectiva
Soportes difusivos, perfusivos y convectivos. Características de las matrices cromatográficas. Diferencias en relación a la transferencia de masa. Performance industrial de los geles blandos difusivos, geles blandos perfusivos y las membranas cromatográficas.
CLASES PRÁCTICAS: Actividades de discusión de casos
– Producción de antivenenos
– Producción de anticuerpos monoclonales y biosimilares
Talleres de resolución de problemas
– Problemas de ruptura celular
– Problemas de diseño de procesos
– Problemas de escalado
DIRECTOR: Prof. Dr. Federico Wolman
COORDINADORA: Prof. Dra. María Victoria Miranda
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico, Farmacéutico, Lic. en Biología, Lic. en Química, Lic. En Biotecnología, Médico, Odontólogo, Veterinario y otras carreras afines.
ARANCEL: $225.000
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 1.5 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 0.75 puntos
OBJETIVOS: Actualizar las estrategias de análisis estadístico y comunicación de resultados obtenidos a partir del estudio de ADN de análisis de evidencias forenses para identificación humana.
PERÍODO DE DESARROLLO: del 15 de abril al 6 de mayo de 2026. Miércoles de 15 a 17:30 hs.
CLASES TEÓRICAS: Se propone realizar una actualización sobre cómo abordar el análisis de marcadores uniparentales y su comunicación mediante informes periciales. Nuevos modelos de cálculos de LR para marcadores autosómicos, análisis de hipótesis exhaustivas, nuevos software y comunicación efectiva de los resultados. Desafíos de la interpretación por parte del poder judicial.
CLASES PRÁCTICAS: Se plantean ejemplos de la casuística y su abordaje utilizando las nuevas estrategias de análisis y comunicación
DIRECTORA: Prof. Dra. Andrea Sala
COORDINADORA: Prof. Dra. Mariela Caputo
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico, especialista em genética forense, otros títulos afines con la práctica de la Genética Forense.
ARANCEL: $80.000
Alumnos del extranjero: 100 USD
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 0.5 punto.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 0.25 punto
OBJETIVOS: Que el profesional se instruya en distintos aspectos del cultivo en Biorreactores llevados a cabo en la Industria Biotecnológica, pudiendo analizar las productividades en las diferentes formas de operar un biorreactor como así también comprender distintos aspectos relacionados con la transferencia de masa y el escalado a nivel industrial.
PERÍODO DE DESARROLLO: del 22 de junio al 3 de julio de 2026. Lunes a Viernes de 9 a 15 hs.
LUGAR DE REALIZACIÓN: Cátedra de Biotecnología, aula 602, 6° piso
CLASES TEÓRICAS: Biotecnología: Introducción; Estequiometria y cinética del crecimiento; Biorreactores y Sistemas de cultivo; Inmovilización y biotransformaciones; Fenómenos de transferencia en Biorreactores.
CLASES PRÁCTICAS: Producción de la enzima galactosidasa producidas por la levadura Kluyveromyces lactis en dos sistemas de cultivo diferentes: Discontinuo (Batch) y Discontinuo Alimentado (Batch-Alimentado). Determinación del coeficiente de transferencia de masa (kla) por método estático en biorreactores.
DIRECTOR: Prof. Dr. Julián Rodriguez Talou
COORDINADORA: Dra. Alejandra Cardillo
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico, Farmacéutico, Biólogo, Biotecnología, Microbiólogo Veterinarios, Agronomos, etc.
ARANCEL: $450.000
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 3.5 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 1.75 puntos.
OBJETIVOS: Que el profesional se instruya en distintos aspectos del cultivo en Biorreactores llevados a cabo en la Industria Biotecnológica, pudiendo analizar las productividades en las diferentes formas de operar un biorreactor como así también comprender distintos aspectos relacionados con la transferencia de masa y el escalado a nivel industrial.
PERÍODO DE DESARROLLO: del 22 al 26 de junio de 2026. Lunes a Viernes de 9 a 15 hs.
CLASES TEÓRICAS: Biotecnología: Introducción; Estequiometria y cinética del crecimiento; Biorreactores y Sistemas de cultivo; Inmovilización y biotransformaciones; Fenómenos de transferencia en Biorreactores.
DIRECTOR: Prof. Dr. Julián Rodriguez Talou
COORDINADORA: Dra. Alejandra Cardillo
REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico, Farmacéutico, Biólogo, Biotecnología, Microbiólogo Veterinarios, Agronomos, etc.
ARANCEL: $225.000
Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:
-Doctorandos de FFyB – UBA
-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.
-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.
-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB
A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:
ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 1.5 puntos.
ASISTENCIA SOLAMENTE: 0.75 puntos.
- Junín 956. PP
- (54) 11 5287 4916 / 17
- posgrado@ffyb.uba.ar
- @posgradoffyb
- @PosgradoFFyB