Cursos Departamento de Microbiología, Inmunología, Biotecnología y Genética

OBJETIVOS: Proporcionar las herramientas teóricos-prácticos para la síntesis de péptidos en fase sólida, análisis de péptidos por HPLC y espectrometría de masas e inmovilización de péptidos en matrices cromatográficas, placas de ELISA y demás soportes sólidos. Brindar los conocimientos actualizados sobre las aplicaciones de los péptidos: a) como agentes terapéuticos; b) como inmunógenos en la elaboración vacunas y sueros hiperinmunes c) como ligandos en la elaboración de kits de diagnóstico y matrices para cromatografía de afinidad; entre otras aplicaciones.

PERÍODO DE DESARROLLO: del 4 al 15 de marzo de 2024. Horarios de actividades sincrónicas: lunes a viernes 9:00 a 15:00 (plataforma zoom)

CLASES TEÓRICAS: Describa los contenidos del curso Aplicaciones de los péptidos: a) como agentes terapéuticos; b) como inmunógenos en la elaboración vacunas y sueros hiperinmunes c) como ligandos en la elaboración de kits de diagnóstico y matrices para cromatografía de afinidad; entre otras aplicaciones. Síntesis de péptidos: Síntesis de péptidos en fase sólida. Péptidos lineales. D-péptidos, péptidos retroinversos, péptidos cíclicos, péptidos ramificados, peptidomiméticos. Síntesis de bibliotecas combinatorias peptídicas. Análisis de péptidos: Evaluación de la identidad y la pureza: RP-HPLC. Secuenciación de péptidos por espectrometría de masas (MS y MSMS). Evaluación de la actividad biológica.

CLASES PRÁCTICAS: Ejercicios con simuladores de toma de decisiones (Ej.: H5P u otros simuladores disponibles): se simulará la síntesis de péptidos con videos y resultados analíticos de las diferentes etapas de la síntesis. Se plantearán situaciones problemáticas donde se deberán tomar decisiones que llevarán a diferentes resultados. Se realizan discusiones por Chats o foros en el aula virtual Moodle de la materia (Campus virtual. FFyB. UBA) y se cerrará con un encuentro sincrónico por Zoom u otra aplicación equivalente.

Ejercicios en Moodle (Cuestionarios, encuestas, H5P u otra aplicación equivalente)

-Análisis de espectros de MS y MSMS. Determinación del peso molecular y la secuencia aminoacídica de los péptidos. Detección de productos de reacciones colaterales indeseadas durante su síntesis y de productos de degradación del péptido. (Ej: formación de dicetopiperazinas, desaminaciones, deshidrataciones, isomerizaciones, permanencia de los grupos protectores, etc.)

– Análisis de matrices cromatográficas con ligando péptidos inmovilizado: isotermas de adsorción y curvas de breakthrough. Cálculos de afinidad y capacidad máxima.

Habrá una etapa de trabajo individual o grupal en la que se tendrá disponible además de las consignas de la ejercitación, un foro o chat para consultas y se cerrará cada ejercitación con un encuentro sincrónico por Zoom u otra aplicación equivalente

DIRECTORA: Dra. Silvia A.Camperi.

 COLABORADORES: Dra. Silvana Giudicessi, Dra. Gabriela Barredo-Vacchelli, Lic. Jésica Rodríguez, Dra. Graciela Calabrese, Dra Rosa Erra- Balsells, Dra. Mariela Marani, Mg. Gerardo Acosta, Dr. Fernando Albericio.

REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico, Farmacéutico, Lic. en Biología, Lic. en Química, Lic. En Biotecnología, Médico, Odontólogo, Veterinario y otras carreras afines. Docentes terciarios de especialidad (Biología, Ciencias Naturales) y demás carreras afines.

Otros requisitos: – Criterios de selección (de resultar necesario): En base al CV y carta de motivación Criterios de selección: Nota en la que se justifique la necesidad de realizar el Curso

ARANCEL:

Extranjeros con título equivalente: U$S 300
Argentinos: $100.000 (Cien mil pesos). El arancel puede modificarse. Consultar en el mes de febrero.

Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:

-Doctorandos de FFyB – UBA

-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.

-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.

-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB

A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:

 ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 2,5 puntos.

ASISTENCIA SOLAMENTE: 1,25 puntos

Comenzar Inscripción [+]

OBJETIVOS: Conocer los componentes de la respuesta inmune innata y su papel en la génesis y regulación del proceso inflamatorio.

Comprender el papel que desempeñan los productos de diversas enzimas proinflamatorias en el curso del proceso inflamatorio.

Estudiar el proceso de formación de vasos en condiciones inflamatorias fisiológicas y patológicas a partir de células precursoras en presencia de moduladores positivos y negativos.

Comprender el papel de los receptores semejantes a Toll en el reconocimiento de productos bacterianos y otros patrones moleculares asociados a patógenos, así como los eventos moleculares intracelulares que se producen en la respuesta inflamatoria sistémica.

Identificar la función de factores de transcripción tipo NF-kB en la inducción de genes en procesos inflamatorios agudos y crónicos, y su papel como blanco de drogas

PERÍODO DE DESARROLLO: 3 de septiembre al 29 de octubre de 2024. Horario de actividades sincrónicas: martes y jueves de 9:30 a 13:00 (Plataforma Zoom) campus FFYB, Google Meet.

CLASES TEÓRICAS: Bases celulares y moleculares de la Inmunidad innata; cinética de su activación; interacción con la respuesta inmune adaptativa. Maduración y diferenciación de células dendríticas. Inflamación. Mediadores. Inflamación Aguda-Shock séptico. El rol de la mitocondria en la inflamación y la apoptosis celular. Angiogénesis y vasculogénesis. Alteraciones inflamatorias por deficiencia nutricional pre y post natal. La inflamación en infecciones. Inflamación crónica: mediadores, su rol en la autoinmunidad, cáncer, y enfermedad cardiovascular. Neuroinflamación. Conceptos de osteoinmunología. Regulación de la respuesta inflamatoria: lípidos, cannabinoides, radiación UV, hormonas esteroideas. Bases farmacológicas de los anti-inflamatorios esteroides y no esteroides.

CLASES PRÁCTICAS: Talleres de discusión: Los alumnos presentarán seminarios sobre trabajos científicos seleccionados por los docentes  coordinadores, sobre los temas tratados en las clases teóricas:

La Inflamación como etapa efectora clave en reacciones inmunes.

Productos de COX y NOS como moduladores de la actividad de metaloproteasas.

Señalización por receptores Toll.

NF-kB como vínculo entre inflamación e inmunidad con el establecimiento y desarrollo de patologías crónicas.

Influencia de los productos inflamatorios sobre las células dendríticas y su papel en la regulación del sistema inmune.

Angiogénesis. Características del proceso en la inflamación fisiológica y patológica.

Mediadores lipídicos y su rol como reguladores positivos y negativos de la inflamación.

Inmunidad innata e inflamación. Una clave para comprender las enfermedades relacionadas con el envejecimiento.

Neuroinflamación. Modelos para el estudio de la inflamación crónica del sistema nervioso.

Sistema inmune cutáneo. Efecto de la radiación ultravioleta en patologías inflamatorias de la piel.

Osteoporosis. Estrógenos como reguladores de la inflamación. Rol terapéutico de fitoesteroides.

Ventajas terapéuticas comparativas en el uso de distintos antiinflamatorios no esteroideos.

Regulación del proceso inflamatorio por glucocorticoides

DIRECTORAS: Dra. Canellada Andrea, Dr. Español Alejandro

 COLABORADORES: Dra. Balboa Luciana, Dra. Cano Eva, Dra. Castro Marisa, Dra. Cela Eliana. Dra. Cevéy Agata, Dr. Diaz Roberto, Dra. Dmytrenko Ana, Dra. Farina Mariana, Dra. Gómez Marisa, Dr. Guerrieri Diego, Higa Romina, Dr. Penas Federico, Dra. Ribeiro María Laura, Lic. Sánchez Yamila, Dra. Tomat Analia

REQUISITOS DE ADMISIÓN: Título de Grado en las siguientes disciplinas: Bioquímica, Farmacia, Medicina, Ciencias Biológicas, Biotecnología, Química, Ciencias Veterinarias, Odontología, Genética, Ingeniería de Alimentos, Ciencia y Tecnología de Alimentos, y graduados de disciplinas afines.

Otros requisitos: Criterios de selección (de resultar necesario): Enviar email con un CV a los directores del curso. Dra. Andrea Canellada (acanell@ffyb.uba.ar); Dr. Alejandro Español (aespan_1999@yahoo.com)

ARANCEL:

Residentes en Argentina: $65000

Residentes en el exterior: u$s100

Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:

-Doctorandos de FFyB – UBA

-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.

-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.

-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB.

A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:

ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 3.5 puntos.

ASISTENCIA SOLAMENTE: 1.75 puntos

 

Comenzar Inscripción [+]

OBJETIVOS: Dar las herramientas teórico practicas necesarias para la evaluación Microbiológica de productos, ambientes y personal operativo intervinientes en la producción de fármacos, cosméticos y biomédicos

PERÍODO DE DESARROLLO: Del 21 de marzo al 6 de julio de 2024. Horario de actividades sincrónicas: miércoles y jueves 18-21 hs. Nº de horas presenciales: Teóricas: 20 Prácticas: 40.

CLASES TEÓRICAS: Introducción a los métodos microbiológicos. Ecología microbiana de las diversas fuentes y procesos. Métodos de monitoreo de productos y materias primas. (clásicos y rápidos).

Buenas prácticas de fabricación. Legislación. Conservadores y evaluación de la actividad de los mismos. Biomédicos controles aplicables. Control de áreas de producción, personal y vestimenta. Control de esterilidad, determinación de endotoxinas. Reglamentaciones

CLASES PRÁCTICAS: Evaluación cuantitativa de los diversos grupos de microorganismos. Validación de métodos microbiológicos. Marchas analíticas según legislación. Evaluación cuali cuantitativa de áreas, superficies y personal. Control de efectividad de agentes conservadores

DIRECTOR: Bioq. Teves Sergio Adrián,

 COORDINADORA: Bioq. Pioli Verónica

 COLABORADORES: Dr. Degrossi Jose, Dra. López de Volder Agustina, Bioq. Noelia Breglia

REQUISITOS DE ADMISIÓN: Farmacéutico, Bioquímico, profesionales del área analítica

ARANCEL:  $ 150.000

Según establece la Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:

-Doctorandos de FFyB – UBA.

-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.

-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.

-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB.

A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:

ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 4 puntos.

ASISTENCIA SOLAMENTE: 2 puntos

Comenzar Inscripción [+]

OBJETIVOS: Conocer y profundizar en las diferentes operaciones unitarias involucradas en los procesos industriales de purificación de bioproductos. Comprender como concatenar secuencialmente las distintas operaciones unitarias para diagramar un proceso integral de purificación que sea racional, viable y económicamente rentable. Aprender y familiarizarse en el uso del equipamiento y de las resinas cromatográficas empleadas en la purificación de bioproductos.

PERÍODO DE DESARROLLO: Del 6 al 17 de mayo de 2024. Horario de actividades sincrónicas:

lunes a viernes horario: Actividades virtuales sincrónicas a convenir. Actividades presenciales 9 a 17

CLASES TEÓRICAS: El curso apunta a que los alumnos conozcan las operaciones unitarias que componen un proceso de purificación de proteínas, así como su uso en forma coordinada para establecer un proceso racional, viable y económicamente rentable.

Unidad 1: Introducción al downstream processing Importancia de la recuperación y purificación del producto (downstream processing). Tipos de producto según sus características químicas y su ubicación en el ente productor. Operaciones unitarias utilizadas en la recuperación y purificación de productos. Productos recombinantes. Importancia y mercado actual. Expresión de los resultados de un proceso de purificación.

Unidad 2: Ruptura celular

Métodos utilizados. Escala de los mismos. Mecanismo. Descripción de los equipos usados.

Ventajas e inconvenientes de cada uno. Elección del método según el microorganismo y la

localización del producto de interés en el mismo.

Unidad 3: Separaciones sólido-líquido

Centrífugas industriales. Filtración, microfiltración, ultrafiltración y ósmosis reversa. Equipos industriales. Estudio comparativo de la centrifugación y la filtración para su uso en distintos procesos biotecnológicos.

Unidad 4: Precipitación

Clasificación de los métodos aplicables en biotecnología según el agente precipitante.

Fundamento teórico y utilización práctica. Ventajas e inconvenientes de cada uno.

Unidad 5: Partición en dos fases acuosas

Concepto teórico. Diagrama de fases. Factores que influyen en la partición de las proteínas.

Aplicación a los procesos biotecnológicos para la purificación de proteínas de interés comercial.

Ventajas e inconvenientes. Partición por afinidad.

Unidad 6: Cromatografía de exclusión molecular

Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de exclusión molecular. Rango de fraccionamiento de proteínas en el estado nativo y en el estado desnaturalizado. Características de las matrices cromatográficas. Elección de la matriz cromatográfica. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.

Unidad 7: Cromatografía de intercambio iónico Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de intercambio iónico. Elección de la matriz cromatográfica. Capacidad nominal y capacidad dinámica. Estrategias para la unión y elución de la proteína de interés. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.

Unidad 8: Cromatografía de interacción hidrofóbica

Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de interacción hidrofóbica. Influencia de la densidad de ligando, temperatura, pH y fuerza iónica en la unión y elución de la proteína de interés. Elección de la matriz cromatográfica. Comparación con la cromatografía de alta performance en fase reversa. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.

Unidad 9: Cromatografía de afinidad Concepto teórico. Tipos de cromatografía de afinidad según su especificidad. Matrices comerciales y de preparación propia. Elección de ligandos de afinidad. Bibliotecas de ligandos. Estrategias para la unión y elución de la proteína de interés. Escalado. Ventajas e inconvenientes de su aplicación a la purificación de biomoléculas en biotecnología.

Unidad 10: Cromatografía preparativa

Concepto teórico. Isotermas de adsorción en el equilibrio. Curvas de breakthrough.

Interacciones soluto-matriz cromatográfica y soluto-soluto en cromatografía preparativa. Efecto de la sobrecarga de muestra sobre los cromatogramas obtenidos.

Unidad 11: Diseño y optimización de procesos de purificación

Diseño de procesos racionales de purificación según las características de las operaciones unitarias. Influencia del número de etapas y del rendimiento de cada una. Acondicionamiento de la muestra. Reglas para racionalizar un esquema de purificación. Optimización del proceso de purififcación: resolución, carga de muestra y velocidad del proceso.

Unidad 12: Purificación de proteínas recombinantes

Métodos según la ubicación celular de la proteína recombinante. Cuerpos de inclusión.

Proteínas de fusión. Métodos para el clivaje de las proteínas de fusión. Purificación en el estado desnaturalizado. Métodos de renaturalización. Estrategias de ingeniería genética para facilitar la purificación del producto. Estudio de casos: activador de plasminógeno tisular e insulina.

Unidad 13: Cromatografía convectiva

Soportes difusivos, perfusivos y convectivos. Características de las matrices cromatográficas.

Diferencias en relación a la transferencia de masa. Performance industrial de los geles blandos difusivos, geles blandos perfusivos y las membranas cromatográficas

CLASES PRÁCTICAS: Actividades de Laboratorio:

-Determinación de parámetros cromatográficos en equilibrio: isotermas de adsorción.

– Determinación de parámetros cromatográficos en columna: curvas de breakthrough

– Proceso integral de purificación de proteína

Actividades de discusión de casos

– Producción de antivenenos

– Producción de anticuerpos monoclonales y biosimilares

Talleres de resolución de problemas

– Problemas de ruptura celular

– Problemas de diseño de procesos

– Problemas de escalado

DIRECTOR: Dr. Wolman, Federico Javier,

 COORDINADORAS: Dra. Miranda, María Victoria, Dra. Camperi, Silvia Andrea

 COLABORADORES: Dra.  Targovnik, Alexandra Marisa, Dra. Giudicessi, Silvana, Dra. Barredo Vacchelli, Gabriela

REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico, Farmacéutico, Lic. en Biología, Lic. en Química, Lic. en Biotecnología, Médico, Odontólogo, Veterinario y otras carreras afines. Docentes terciarios de especialidad (Biología, Ciencias Naturales) y demás carreras afines.

ARANCEL: A definir

Según establece la Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:

-Doctorandos de FFyB – UBA.

-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.

-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.

-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB..

A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:

ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 3.5 puntos.

ASISTENCIA SOLAMENTE: 1.75 puntos

 

Comenzar Inscripción [+]

OBJETIVOS: Conocer y profundizar en las diferentes operaciones unitarias involucradas en los procesos industriales de purificación de bioproductos. Comprender como concatenar secuencialmente las distintas operaciones unitarias para diagramar un proceso integral de purificación que sea racional, viable y económicamente rentable. Aprender acerca el uso del equipamiento y de las resinas cromatográficas empleadas en la purificación de bioproductos.

PERÍODO DE DESARROLLO: Del 6 al 10 de mayo de 2024. Horario de actividades sincrónicas: lunes a viernes clases sincrónicas a convenir en la franja 9 a 18

CLASES TEÓRICAS: El curso apunta a que los alumnos conozcan las operaciones unitarias que componen un proceso de purificación de proteínas, así como su uso en forma coordinada para establecer un proceso racional, viable y económicamente rentable.

Unidad 1: Introducción al downstream processing Importancia de la recuperación y purificación del producto (downstream processing). Tipos de producto según sus características químicas y su ubicación en el ente productor. Operaciones unitarias utilizadas en la recuperación y purificación de productos. Productos recombinantes. Im- portancia y mercado actual. Expresión de los resultados de un proceso de purificación.

Unidad 2: Ruptura cellular Métodos utilizados. Escala de los mismos. Mecanismo. Descripción de los equipos usados. Ventajas e inconvenientes de cada uno. Elección del método según el microorganismo y la localización del producto de interés en el mismo.

Unidad 3: Separaciones sólido-líquido

Centrífugas industriales. Filtración, microfiltración, ultrafiltración y ósmosis reversa. Equipos industriales. Estudio comparativo de la centrifugación y la filtración para su uso en distintos procesos biotecnológicos.

Unidad 4: Precipitación Clasificación de los métodos aplicables en biotecnología según el agente precipitante. Fundamento teórico y utilización práctica. Ventajas e inconvenientes de cada uno.

Unidad 5: Partición en dos fases acuosas

Concepto teórico. Diagrama de fases. Factores que influyen en la partición de las proteínas.

Aplicación a los procesos biotecnológicos para la purificación de proteínas de interés comercial.

Ventajas e inconvenientes. Partición por afinidad.

Unidad 6: Cromatografía de exclusión molecular Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de exclusión molecular. Rango de fraccionamiento de proteínas en el estado nativo y en el estado desnaturalizado. Características de las matrices cromatográficas. Elección de la matriz cromatográfica. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.

Unidad 7: Cromatografía de intercambio iónico Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de intercambio iónico. Elección de la matriz cromatográfica. Capacidad nominal y capacidad dinámica. Estrategias para la unión y elución de la proteína de interés. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.

Unidad 8: Cromatografía de interacción hidrofóbica Concepto teórico. Distintos modos de cromatografía de interacción hidrofóbica. Influencia de la densidad de ligando, temperatura, pH y fuerza iónica en la unión y elución de la proteína de interés. Elección de la matriz cromatográfica. Comparación con la cromatografía de alta performance en fase reversa. Escalado. Equipos utilizados industrialmente.

Unidad 9: Cromatografía de afinidad Concepto teórico. Tipos de cromatografía de afinidad según su especificidad. Matrices comerciales y de preparación propia. Elección de ligandos de afinidad. Bibliotecas de ligandos. Estrategias para la unión y elución de la proteína de interés. Escalado. Ventajas e inconvenientes de su aplicación a la purificación de biomoléculas en biotecnología.

Unidad 10: Cromatografía preparative Concepto teórico. Isotermas de adsorción en el equilibrio. Curvas de breakthrough. Interacciones soluto-matriz cromatográfica y soluto-soluto en cromatografía preparativa. Efecto de la sobrecarga de muestra sobre los cromatogramas obtenidos.

Unidad 11: Diseño y optimización de procesos de purificación Diseño de procesos racionales de purificación según las características de las operaciones unitarias. Influencia del número de etapas y del rendimiento de cada una. Acondicionamiento de la muestra. Reglas para racionalizar un esquema de purificación. Optimización del proceso de purifi- cación: resolución, carga de muestra y velocidad del proceso.

Unidad 12: Purificación de proteínas recombinants Métodos según la ubicación celular de la proteína recombinante. Cuerpos de inclusión. Proteínas de fusión. Métodos para el clivaje de las proteínas de fusión. Purificación en el estado desnaturalizado. Métodos de renaturalización. Estrategias de ingeniería genética para facilitar la purificación del producto. Estudio de casos: activador de plasminógeno tisular e insulina.

Unidad 13: Cromatografía convectiva

Soportes difusivos, perfusivos y convectivos. Características de las matrices cromatográficas. Diferencias en relación a la transferencia de masa. Performance industrial de los geles blandos difusivos, geles blandos perfusivos y las membranas cromatográficas.

CLASES PRÁCTICAS: Actividades de discusión de casos

– Producción de antivenenos

– Producción de anticuerpos monoclonales y biosimilares

Talleres de resolución de problemas

– Problemas de ruptura celular

– Problemas de diseño de procesos

– Problemas de escalado

DIRECTOR: Dr. Wolman, Federico Javier,

 COORDINADORAS: Dra. Miranda, María Victoria, Dra. Camperi, Silvia Andrea

 COLABORADORES: Dra.  Targovnik, Alexandra Marisa, Dra. Giudicessi, Silvana, Dra. Barredo Vacchelli, Gabriela, Lic. Pilato, Laura Daniela

REQUISITOS DE ADMISIÓN: Bioquímico, Farmacéutico, Lic. en Biología, Lic. en Química, Lic. En Biotecnología, Médico, Odontólogo, Veterinario y otras carreras afines. Docentes terciarios de especialidad (Biología, Ciencias Naturales) y demás carreras afines.

Otros requisitos:

Criterios de selección (de resultar necesario): CV y motivación personal

ARANCEL: A definir

Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:

-Doctorandos de FFyB – UBA

-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.

-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.

-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB.

A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:

 ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 1.5 puntos.

ASISTENCIA SOLAMENTE: 0.75 puntos

 

Comenzar Inscripción [+]

OBJETIVOS: Dar a conocer el potencial y la aplicabilidad de la Espectrometría de Masas en Microbiología.

Capacitar a los participantes en los aspectos teóricos y prácticos de la espectrometría de masa MALDI-TOF en el laboratorio de Microbiología Clínica. Aumentar su capacidad analítica y crítica para una correcta aplicación e interpretación de la técnica de MALDI-TOF MS.

 

PERÍODO DE DESARROLLO: Del 18 al 22 de noviembre de 2024. Lunes a viernes de 9 a 17:30

 

CLASES TEORICAS: Fundamento de la Espectrometría de Masas conocida como Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time-Of-Flight Mass Spectrometry (MALDI-TOF MS). Equipos disponibles en el mercado. Aplicaciones en microbiología. Identificación bacteriana a partir de colonia o pátina.

Calibradores. Score. Interpretaciones e informes. Identificación directa desde botella de hemocultivo, u orina. Modelos experimentales y validaciones clínicas. Identificación de levaduras. Procesamientos de muestra. Espectros. Bases de datos: construcción y mejoras. Tipificación de microorganismos.

Aplicaciones de los métodos moleculares y MALDI-TOF MS en el estudio de factores de virulencia y de la resistencia a antibióticos. Distintas estrategias para caracterizar mecanismos de resistencia: métodos de hidrólisis o modificación de antibióticos, detección de biomarcadores, evaluación del crecimiento o de la proteína efectora. La importancia de los controles. Machine learning. Aplicación de herramientas bioinformáticas. Sensibilidad y especificidad

 

CLASES PRACTICAS

  • Distintas formas de preparación de muestras microbiológicas y su impacto en la correcta:

colonia directo, extracción en placa y extracción en tubo

  • Calibradores y calibración
  • Distintas plataformas comerciales y las bases de datos: equipo Bruker vs equipo Vitek
  • Adquisición de espectros
  • Identificación de levaduras y hongos filamentoso
  • Procesamiento de botella de hemocultivos positivizadas, pátinas y otras muestras clínicas
  • Ampliación de base de datos: Achromobacter spp.
  • Caracterización de biomarcadores de resistencia: sospecha de KPC y MCR.
  • Construcción de controles
  • Método de hidrólisis
  • Detección de proteína madura: CMY y KPC desde colonia y hemocultivos

 

DIRECTORES: Prof. Dr.  José Di Conza, Prof. Dr. Carlos Vay, Mg. Mónica Prieto

COORDINADORES: Dr. Roque Figueroa- Espinosa, Prof. Dra. Marisa Almuzara, Mg. Florencia Rocca

COLABORADORES: Prof. Dr. Gabriel Gutkind, Mg. Constanza Taverna, Dr. Claudia Barberis, Dr. Mariana Papalia, Lic. Agustina Costa.

 

REQUISITOS DE ADMISIÓN Bioquímicos, Farmacéuticos, Biólogos, Médicos, Biotecnólogos, Licenciados en Genética, Veterinarios, Licenciados en Saneamiento Ambiental o graduados universitarios en carreras afines

 

ARANCEL $ 85.000

Según establece la Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:

-Doctorandos de FFyB – UBA.

-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.

-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.

-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB.

 

A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:

ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 3 puntos.

ASISTENCIA SOLAMENTE: 1.5 puntos

 

Comenzar Inscripción [+]

OBJETIVOS: La Genética y Genómica es posiblemente, dentro de las ciencias de la vida, la que mayor auge ha adquirido en los últimos años. Paralelamente a su desarrollo, cada día tiene más repercusiones en todas las facetas de la biomedicina: diagnóstico, pronóstico y terapéutica. El programa está dividido en unidades con los siguientes objetivos: 1) Reflexionar sobre la variabiliad genética y los mecanismos de la transmisión y expresión de la información genética en humanos. 2) Conocer los mecanismos moleculares que dan cuenta de la aparición y la progresión de las enfermedades, sentando las bases de estrategias de prevención y diagnóstico personalizados. 3) Aprender las tecnologías genéticas y genómicas para la identificación de variantes de secuencia. 4) Entender el rol de los polimorfismos genéticos en la respuesta a los fármacos para asegurar su eficacia terapéutica y minimizar los posibles efectos adversos de acuerdo a los perfiles genéticos.

PERÍODO DE DESARROLLO: Del 8 de mayo al 17 de julio de 2024. Horario de actividades sincrónica: Miércoles de 18 a 22.

CONTENIDOS DEL CURSO: El genoma humano. Organización del genoma humano. El epigenoma. Variantes Génicas. Clasificación de las variantes génicas. Metodologías moleculares para la identificación de variantes, clásicas y de última generación. Edición del genoma. Bioinformática. Concepto de enfermedades genéticas: germinales y somáticas; monogénicas, oligogénicas y multifactoriales; monoalélicas y polialélicas. Principios de genética médica. Diagnóstico molecular. Genética Molecular de Hemoglobinopatías y Talasemias. Neurobiología Molecular. Endocrinología Molecular. Bases genético-moleculares de las enfermidades multifactoriales. Genética en Oncohematología. Introducción a la Farmacogenética y Farmacogenómica. Farmacogenómica clínica. Diagnóstico molecular y genómico de

enfermedades infecciosas.

DIRECTORA: Prof. Dra. Rivolta, Carina Marcela,

COORDINADOR: Dr. López, Ariel Pablo,

COLABORADORES: Prof. Dr. Targovnik, Héctor Manuel, Prof. Dra. Rossetti, Liliana Cármen, Dr. Esperante, Sebastían Andrés, Dra. Giliberto, Florencia, Dra. Belli, Carolina, Dr. Wilda, Maximiliano, Dra. Millan, Andrea

REQUISITOS DE ADMISIÓN: Estudiantes de Doctorado y Maestría, Bioquímicos, Farmacéuticos, Médicos, Licenciados en Biología, Licenciados en Biotecnología, Licenciados en Genética o carreras afines

 

ARANCEL $ 65.000

200 USD para alumnos del exterior.

Res (CD) 837/89, acceden al 50% de descuento:

-Doctorandos de FFyB – UBA

-Becarios UBA, CONICET y de otras instituciones oficiales de gestión estatal.

-Residentes farmacéuticos y/o bioquímicos de organismos oficiales de gestión estatal.

-Docentes con dedicación exclusiva de FFyB

A los fines que establece el artículo 15° (RESCS-2019-1686-E-UBA-REC) del Reglamento de Doctorado, este curso acredita por cumplimiento de:

ASISTENCIA Y APROBACIÓN: 2 puntos.

ASISTENCIA SOLAMENTE: 1 puntos

Comenzar Inscripción [+]